Biología del Linfocito, Biología Molecular (GI-1195), Genética de Poblaciones (GI-2044) - USC

Datos de Contacto


Teléfono: (+34) 981563100; Ext: 16936 y 16922

Fax: -.

Dirección:
Centro de Investigaciones Biológicas de la USC (CIBUS).
C/ Lope Gómez de Marzoa s/n. Campus Vida.
15782
Santiago de Compostela.

Imágen Sede





Información General Organización

Este grupo de investigación de la USC abarca las siguientes líneas fundamentales:

  • Estudio de la biología del linfocito desde la perspectiva dinámica del papel de sus membranas en la activación y regulación de la respuesta del linfocito vía CD3-TCR en la sinapsis inmunológica. En este ámbito, se estudian la señalización vía receptores celulares, la integración del proceso y su regulación, principalmente por interleukinas, centrándose en el coestimulador CD26, las diferentes isoformas de la fosfatasa CD45. Caracterización y fenotipado de distintas poblaciones celulares humanas
  • Búsqueda de biomarcadores séricos en enfermedades crónicas, como la artritis reumatoide
  • Identificación de marcadores genéticos moleculares asociados con caracteres del fenotipo, detección de errores de genotipado asociados con la técnica de PCR, estimación de parámetros genéticos poblacionales, análisis de sistemas genéticos multiloci y sus interacciones, asesoramiento genético y estadístico.




 

Organización


Nombre oficial de la organización: Centro de Investigaciones Biológicas de la USC .

Titularidad de la organización: Pública.

Denominación del grupo: “Biología del Linfocito Biología Molecular” y “Genética de Poblaciones” (En proceso de fusión) .

Investigador Responsable: Dra. Montserrat Nogueira Álvarez y Dr. José Carlos Zapata Babío.

Persona de contacto: Dra. Montserrat Nogueira Álvarez y Dr. José Carlos Zapata Babío.

Página web: -.

Datos Infraestructuras

Incluye:


Laboratorio BQ2 (nivel de seguridad biológica 1) en el Centro de Investigaciones Biológicas de la USC dotado de equipo básico como pHmetro, agitadores, cámara fría, neveras, congeladores (-20ºC, -80ºC), cántara N2 líquido, destilador, autoclave, estufas de secado, bomba de vacío, equipo de filtración, baños, etc.
Sala de cultivos dotada de dos incubadores de CO2, 3 cabinas de flujo láminas y dos microscopios ópticos, uno de ellos invertido (Wilivert, Will-Welzlar).

  • Centrífugas: Beckman G-6R, Heraeus Labofuge 400R, Heraeus Biofuge pico y Beckman J2-HS Termocicladores
  • Ultracentrífuga: Beckman L8-M.
  • Lector colorimétrico de placas de 96 pocillos (MultiScan MS, LabSystem).
  • Equipo de electroforesis MiniProtean (II y III; BioRad), Protean II xi Cell (BioRad), Ettan DALTsix Electrophoresis System (GE Healthcare Life Sciences, MiniSubCells (BioRad) y sistemas de transferencia semiseca y húmeda (Multiphor II-Novablot II, Pharmacia-LKB; Minitranfer SubCells BioRad), Fuente de alimentación (ECPS 3000/150, Pharmacia-LKB).
  • Equipo de isoelectroenfoque: Protean IEF Cell (BioRad)
  • HPLC (Äkta Purifier 10, Amersham-Pharmacia Biotech).
  • Equipo de análisis de imagen: Densitómetro calibrado ScanMaker 9800 XL (Microtek). Molecular Imager Gel DocTM XR+ (BioRad). Software de análisis PDQuest (BioRad).
  • Plataforma de Citometría de la USC. Citómetro de flujo (FACSsort, BD).

Personal


Personal fijo

Número Doctores: 4.

Número Licenciados: 0.

Número Técnicos: 1.

Número Ótro Personal: 0.


Personal Contratado

Número Doctores: 0.

Número Licenciados: 0.

Número Técnicos: 0.

Otro Personal : 0.


Capacidades Disponibles


  • Proteómica cualitativa y cuantitativa: electroforesis de 1D y 2D. Estudio del proteoma de suero y plasma mediante 2D. Fraccionamiento diferencial de proteínas. Uso de librerías peptídicas (ProteoMiner). Identificación de proteínas mediante MS (PMF y MS/MS) y Western blot. Búsqueda de biomarcadores séricos en enfermedades crónicas, como la artritis reumatoide. Interactómica.
  • Purificación de proteínas mediante diferentes técnicas de cromatografía. HPLC.
  • Purificación de diferentes tipos celulares mediante diferentes metodologías, como los sistemas magnéticos.
  • Background en Inmunología humana. Estudios con células T reguladoras y células supresoras mieloides humanas. Asma.
  • Cultivos celulares: líneas celulares y células primarias en suspensión y adherentes. Transfección.
  • RNA interferentes
  • Ensayos de actividad enzimática. Especialistas en proteasas (CD26).
  • Estudios de microdominios de membranas (Rafts lipídicos) y de dinámica de proteínas en la superficie de las células.
  • Técnicas inmunológicas: generación de anticuerpos monoclonales (hibridomas), ensayos de citotoxicidad y proliferación (CFSE, BrdU, timidina tritiada). Apoptosis. ELISA.
  • Técnicas de microscopía de fluorescencia y confocal.
  • Plataforma de citometría de flujo de la USC.
  • Identificación de marcadores genéticos moleculares asociados con caracteres del fenotipo.
  • Detección de errores de genotipado asociados con la técnica de la PCR.
  • Estimación de parámetros genéticos poblacionales.
  • Análisis de sistemas genéticos multiloci y sus interacciones.
  • Asesoramiento genético y estadístico.





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